Тема. Асептика і антисептика. Профілактика Сніду і гепатиту, Тема.

02.10.2015

Тема. Організація хірургічного кабінету (відділення) стоматологічної поліклініки

Тема. Асептика і антисептика. Профілактика Сніду і гепатиту.

^ Мета. Викласти принципи асептики та антисептики в хірургічній стоматології. Навчити методам обробки рук хірурга і опера інформаційного поля.

Метод проведення. Групове заняття.

^ Місце проведення. Лікувальний і фантомний кабінети.

Забезпечення

Технічне оснащення: стоматологічні установки, крісла, набори інструментів хірургічного відділення стоматологич еской поліклініки, устаткування, діапроектор, графопроектор.

Навчальні посібники: фантоми голови і щелепи з штучними та природними зубами, стенди, муляжі, таблиці, слайди, у идеофильм, методичні посібники, медикаменти для обробки і стерилізації інструментарію.

Засоби контролю: контрольні запитання, завдання, ситуацион ві завдання, питання для тестового контролю знань, домашнє завдання.

Питання, вивчені раніше і необхідні для даного заняття. Принципи організації медичної установи.

^ План заняття

1. Перевірка виконання домашнього завдання.

2. Теоретична частина. Обробка рук хірурга. Обробка операційного поля. Дезінфекція та стерилізація. Заходи профілактики Сніду і гепатиту. Співбесіда з контрольних питань і контрольним завданням. Рішення навчальних ситуаційних завдань.

3. Клінічна частина. Демонстрація на пацієнта методу обробки операційного поля.

4. Лабораторна частина. Демонстрація викладачем обладнання та медикаментів для проведення дезінфекції та стерилізації, постановки проб на якість обробки і стерилізації інструментарію, способів обробки рук хірурга. Демонстрація на фантоми правил обробки опе раціонної поля.

5. Самостійна робота. Проведення студентами проб на якість обробки інструментарію, обробка операційного поля на фантоми. Розбір результатів самостійної роботи студентів.

6. Рішення студентами контрольних ситуаційних завдань.

7. Тестовий контроль знань.

8. Завдання на наступне заняття.

Анотація

Найважливішим завданням в роботі лікаря-стоматолога-хірурга є попередження запального характеру. Основний закон хірургії – все, що стикається з раною, має бути стерильним. Правила роботи для забезпечення цього включають обробку і захист рук хірурга, операційного поля, підготовку інструментів, приміщення, захист хворих і медичного персоналу від інфікування і попередження поширення інфекцій.

За організацію дезінфекційно-стерилізаційних заходів в лікувально-профілактичному закладі відповідає керівник. Контроль за дотриманням санітарно-епідеміологічного режиму найчастіше покладається на заступника по лікувальній роботі, госпітального вра ча-епідеміолога і головну (старшу) медичну сестру.

Термін «антисептика» (грец. Anti – проти, sepsis – гниття) вперше запропонував англійський учений В. Прінгл в 1750 р. для позначення протигнильний дії мінеральних кислот.

Асептикой називають систему профілактичних заходів, які забезпечують попередження потрапляння мікроорганізмів у рану, органи і тканини хворого в процесі будь-яких лікарських маніпуляцій шляхом використання організованих заходів, фізичних факторів і хімічних препаратів.

Асептика включає:

– стерилізацію інструментів, матеріалів, приладів, повітря вання та ін;

– спеціальну обробку рук медперсоналу;

– дотримання особливих прийомів при проведенні лікувальних заходи тий;

– здійснення спеціальних гігієнічних і організаційних заходів в лікувальному закладі.

У лікарських кабінетах, зуботехнічних лабораторіях та інших приміщеннях для зниження обсіменіння робочих поверхонь і повітря умовно-патогенної і патогенної мікрофлорою проводять вологе прибирання і кварцування до і після зміни і в кінці робочого дня. Поточну прибирання (лікарських столиків і крісел) проводять після кожного хворого. При вологому і поточному прибиранні використовують наступні дез.засоби: 3% розчин хлораміну, чи 0,1% розчин «Клорсепта-17» або «Клорсепта-87», 0,056% розчин «Пресепта», 0,4% розчин «Септодор-форте». Ганчір’я для прибирання кабінету, йоржі після використання дезінфікуються у розчинах вище перерахованих препаратів.

Генеральне прибирання приміщень в хірургічних, перев’язувальних і пародонтологічних кабінетах (при проведенні малих операцій) проводиться один раз в тиждень, в інших кабінетах раз в місяць. Приміщення звільняють від предметів, інвентарю, інструментів. У якості дезинфектанта використовують 5% розчин хлораміну або 5% розчин аламинола або 6% розчин перекису водню з 0,5% розчином миючого засобу або активоване 0,5% розчин хлораміну.

Антисептика – система заходів, спрямованих на зменшення кількості мікроорганізмів у рані, зниження небезпеки їх проникнове ня в рану і розвитку в ній.

^ З поняттям антисептики тісно пов’язане визначення дезінфекції. Дезінфекція – процес, що знижує кількість патогенних мікроорганізмів, але не обов’язково спор бактерій, з неживих об’єктів або шкірного покриву до рівня, що не представляє небезпеку для здоров’я. Дезінфекції піддається весь стоматологічний інструментарій та вироби, що застосовуються при роботі з пацієнтом. Дезінфекція хімічними засобами здійснюється шляхом повного занурення у розчин. Вироби, що не стикаються безпосередньо зі слизовою оболонкою порожнини рота пацієнта (наконечники, світловоди ламп і ін), можуть оброблятися мо тодом 2-х кратного протирання (до і після роботи з кожним пацієнтом) 70% спиртом або 3% розчином хлораміну.

^ Розрізняють фізичні, механічні, хімічні, біологічні та комбіновані методи дезінфекції.

Механічні – полягають в первинній хірургічній обробці рани: висічення країв і дна рани, видалення нежиттєздатних тканин і чужорідних тел. До механічної антисептики відноситься метод промивання ран і порожнин антисептичними розчинами.

^ При фізичних – застосовується висока температура, ультрафиол етовые промені, ультразвукова стерилізація. До фізичних методів стерилізації відносяться паровий, горячевоздушный (сухоповітряною), методи інфрачервоного опромінення, фільтрування і радіаційний.

Хімічні – застосування різних хімічних речовин з бакт ерицидным або бактеріостатичну дію. Застосовуючи хімічну антисептики, потрібно прагнути до того, щоб загальне і місцеве дію хімічних антисептиків було достатньо безпечним для макроорганізму і його клітин і згубним для мікробів. У групу хімічних антисептиків входять препарати, що застосовуються для знезараження рук, операційного поля, інструментів та ін. З хімічних речовин використовують йод, спирт, хлорамін і ін Хімічні методи включають газовий метод і стерилізацію розчинами хімічних препаратів (йод, спирт, хлорамін).

Біологічні – спрямовані на підвищення захисних сил організму (імунні препарати), а також на створення умов, несприятливих для розмноження мікроорганізмів в рані.

Біологічні методи проводять з використанням груп речовин:

1. Антибіотики – речовини з вираженими бактеріостатичними або бактерицидними властивостями.

2. Бактеріофаги у вигляді сироваток. Слід особливо відзначити проте олитические ферменти, що застосовуються при лікуванні рани. Знищуючи нежиттєздатні тканини, вони позбавляють мікробні клітини поживних речовин, сприяючи тим самим більш швидкому загоєнню рани.

^ Комбіновані способи – передбачають вищеперелічені методи в різних поєднаннях.

Першим етапом є передстерилізаційне очищення інструментарію – комплекс заходів, спрямованих на видалення білкових, жирових, механічних забруднень і залишкових кількостей ліках сований препаратів.

^ Дезінфекція інструментарію є другим етапом обробки інструментарію.

Третім, завершальним етапом обробки інструментарію є стерилізація. Стерилізація спрямована на знищення всіх мікроорганізмів, у тому числі і спорових форм. Вона проводиться для попередження поширення низки інфекційних захворювань, збудники яких передаються через кров, біологічні рідини.

Стерилізації піддаються всі вироби, що стикаються з раневою поверхнею, контактують з кров’ю або ін’єкційними препаратами, медичні інструменти, які в процесі експлуатації стикаються зі слизовою оболонкою порожнини рота і можуть викликати її пошкодження. Стерилізації підлягають стоматологічні набори в лотках, фрези металеві дзеркала, бори та інші інструменти.

Найбільш оптимальним варіантом організації передстерилізаційного очищення і стерилізації є обладнання та оснащення центру лизованного стерилізаційного відділення.

Існують наступні методи стерилізації: паровий, повітряний, хімічний: (газовий, холодний.).

^ Паровий метод стерилізації застосовується для виробів з корроз ионностойких металів, скла, виробів з текстильних матеріалів (хірургічне білизна, перев’язувальний матеріал), гуми (рукавички, трубки, катетери, бужі), металу і скла.

Автоклавування проводиться при 2 атм. 20 хвилин при температурі 132°С для виробів з скла, стійких металів, текстильних матеріалів, силіконової гуми. При тиску 1,1 атм. – 45 хвилин і температурі 120°С стерилізуються вироби з гуми, латексу і окремих полімерних матеріалів.

Надійність парової стерилізації автоклавер контролює з використанням візуального методу (час, тиск, порядок роботи на стери лизаторе) з записом даних кожного циклу автоклавування в «Журналі роботи автоклава», встановленого зразка.

^ З метою оперативного контролю в установки, в бікси, а також поза їх закладаються термовременные хімічні індикатори ІС-120, ІС-130 фірми «Винар».

Періодично автоклавер з частотою 1 раз в 2 тижні проводить контроль роботи парового стерилізатора з використанням биотестов, перевірку показань точності манометра, повноту видалення повітря з стерілізуемих матеріалів, а також перевірку герметичності камери. При проведенні періодичного контролю використовуються максимальні термометри СП-82.

^ Повітряний метод стерилізації у сухожарових шафах рекомендується для виробів з металу, скла. Режим стерилізації 180 °С – 60 хвилин або 160 °С – 150 хвилин. При 180° С використовують індикатори: термовременные паперові ІС-180, а на 160 °С – ІС-160 фірми «Винар», індикаторна стрічка Индэйр ТМ 1222 фірми «ЗМ» США. Тимчасово допускається використання хімічних індикаторів плавлення на 180° З – бурштинова кислота, тіосечовина, сахароза, гідрохінон; при 160 °С – левоміцетин і ТІД-160, ТІД-180 фірми МКБ р. Омська. Хімічні індикатори закладаються в кожну упаковку, а також поза її в середню, верхню зони стерилізаційної камери для самоконтролю за роботою стерилізатора медпрацівником.

Кожен цикл роботи стерилізатора реєструється в журналі стерилізації, де зазначаються найменування усіх виробів, параметри і результати контролю.

Для парової стерилізації використовують стерилізаційні коробки без фільтра, подвійну м’яку упаковку з бязі, папір мішечна волого міцну (строк зберігання – 3 доби без розтину), бікси з фільтрами (строк зберігання – до 20 діб). Для повітряної стерилізації використовують папір крепированную (термін зберігання в упаковці – 3 доби без розтину), пакети фірми «Септодонт», лотки з кришками (строк зберігання – 6 годин без розтину), папір різних марок, дозволену для цих цілей.

^ Після розтину всі вироби простерилізовані використовуються протягом 6 годин з дотриманням правил асептики.

Хімічний метод найбільш часто використовують для стерилізації виробів з полімерних матеріалів, гуми, спеціального скла, корозійно-нестійких металів. Розчин перекису водню може використовуватися протягом 7 діб з дня приготування при зберіганні його в темній закритій ємності. Розчин дезоксана-1 може використовуватися протягом доби. Але стерилізувати повторно в цих розчинах не можна.

Для стерилізації використовують емальовані, скляні або пластмасові ємності з щільно закриваються кришками.

вироби, що стерилізується повністю занурюють в розчин, після закінчення стерилізаційної витримки вироби витягують стерильними пінцетами з розчину і двічі занурюють на 5 хв в ємності з дистильованою водою, щоразу змінюючи її за дотримання асептичних умов. Ємності попередньо стерилізують паровим методом при t -132 °С протягом 20 хвилин. Після цього стерильним пінцетом інструмент пе рекладывают в асептичних умовах у стерильні бікси, вистелені стерильним простирадлом. Термін зберігання простерилізованих виробів – не більше 3-х діб.

^ При газовому методі стерилізації використовують:

– окисел етилену – в дозі 1000 мг/дм 3 при тиску газу-0,55 кг/см 2 і температурі 18° С – 960 хвилин;

– пари 40% розчину формальдегіду в етиловому спирті – в дозі 150 мг/дм 3 при температурі в стерилізаційній камері 80°С, час стерилізації – 180 хвилин. Дозволяється використовувати 10% розчини «Гигасепта ФФ», «Колдспора» у відповідності з методичними вказівками.

Газовий метод стерилізації використовується в стерилізаторі-аераторі EAGLE і стерилізаторі «СТЕРРАД».

Дзеркала після проведення дезінфекції, передстерилізаційної обробки стерилізують за одним з таких методів: паровим, повітряним вим, хімічним (згідно із зазначенням у паспорті) або робочу частину – в гласперленовом стерилізаторі. Дзеркала, вкриті амальгамою, стерилізуються хімічним методом.

^ Скла для замішування пломбувального матеріалу обробляються перерахованими вище методами і стерилізують в автоклаві.

Скляні шприци для багаторазового використання піддаються дезінфекції, передстерилізаційної обробки та стерилізації одним із дозволених методів.

Дрібний стоматологічний інструментарій: бори, ендодонтичний інструмент, дзеркала без ручок після передстерилізаційної обробки під час роботи з пацієнтом допускається стерилізувати в гласперленовом стерилізаторі; бори – 20 секунд, дзеркала – 1 хвилину, зонди, шпателі – 1,5 хвилини, в стерилізаторі «Термоэст» – безпосередньо перед використанням.

^ Зберігання стерильних інструментів і матеріалів

Інструмент у пакетах (якщо не порушена герметичність) може під час робочої зміни перебувати у шафах, столах і залишається стерильним 21 день, якщо заклеєні пакети, 3 дні, якщо пакети закріплені скріпками.

Вироби, простерилізовані без упаковки, зберіганню не підлягають і повинні бути використані одразу після стерилізації. Допускається використовувати цей інструмент протягом 6 годин, якщо в кабінеті стоїть сухожаровый шафа і простерилизованный інструмент відразу ви кладывают на стерильний стіл.

Категорично забороняється простерилизованный в ЦСО без упаковки інструмент перекладати на візок, покриту стерильною простирадлом, а потім використовувати цей інструмент у відділеннях.

^ Інфекційний контроль якості проведення передстерилізаційної обробки інструментів

Проводиться шляхом постановки азопирамовой або амідопіринової проб на наявність залишків крові з занесенням результатів у Журнал обліку якості передстерилізаційної обробки» і фенолфталеиновой – на н наявність залишкових кількостей лужних компонентів миючого засобу.

^ Фенолфталеїнова проба

Для постановки проби використовують 1 % спиртовий розчин фенолфт алеина, який складається з 60 г спирту, 40 г дистильованої води, 1 г фенолфталеїну. Спиртовий розчин наносять піпеткою на вату і нею протираються оброблені інструменти. При наявності синтетичних миючих засобів з’являється рожеве забарвлення. При цьому всю партію виробів піддають спочатку обполіскування проточною, а потім дистильованою водою.

^ Азопірамова проба

Для приготування 1 л р-ра азопирама беруть 100,0 г амідопірину і 1,0-1,5 г солянокислого аніліну, речовини змішуються і заливаються 95° етиловим спиртом до об’єму 1 літр. Азопирам зберігається при температурі 18-23 °С не більше одного місяця. Помірне пожовтіння реактиву протягом цього часу без випадання осаду не знижує його якість.

Безпосередньо перед перевіркою якості передстерилізаційного очищення виробів готують робочий розчин, змішуючи в тигельке рівні об’ємні кількості «азопирама» і 3% розчин перекису водню. Приготовлений розчин наносять на вату та протирають їм інструмент. У присутності слідів крові через 0,5-1 хвилину після контакту реактиву з забрудненими інструментами з’являється спочатку фіолетове забарвлення, що переходить у рожево-бузкове або бура (бура при наявності на інструментах іржі). Придатність робочого розчину перевіряється шляхом нанесення 2-3 крапель реактиву на кров’яний пляма. Якщо колір реактиву змінюється, то він придатний до вживання, якщо протягом 1 мі нуты фарбування не з’являється, реактивом користуватися не можна.

Проба з азопирамом по чутливості перевищує в 10 разів амидопириновую пробу.

^ Амидопириновая проба

Перед постановкою проби в тигельке змішують рівні кількості 5% спиртового розчину амідопірину, 30% розчину оцтової кислоти і 3% розчину перекису водню. Поява синьо-зеленого забарвлення при нанесенні реактиву на виріб свідчить про наявність залишків крові. Реактив перевіряють на приховану кров, так само як і в попередньому випадку.

При позитивній реакції на приховану кров всю партію виробів піддають повторній обробці.

Контролю щодня піддають 1 % від одночасно оброблених виробів одного найменування (партії), але не менше 3-5 проб.

^ Підготовка рук хірурга та операційного поля

Підготовка рук хірурга

1 спосіб. Рецептури «С-4» (первомур) – суміш перекису водню, мурашиної кислоти. На 1 л р-ра – перекис ^ 30-33% – 17, 1 мл, мурашина кислота 100% – 6,9 мл, 85% – 8,1 мл. Розчин готується на одну добу.

Руки миють водою з милом без щітки 1 хв, обполіскують водою, витирають стерильною серветкою, далі руки опускають в розчин «С-4»в емальованому тазу на 1 хв, витирають стерильною серветкою і одягають у стерильні рукавички.

2 спосіб. Використання 0,5% розчину гибітану в 70% етиловому спирті в співвідношенні 1:40 (до 40 мл спирту 1 мл 20% водного розчину хлоргексидину). Руки миють водою з милом без щітки 1 хв, обполіскують водою, витирають стерильною серветкою, далі двічі по 1 хвилині добре змоченим стерильною серветкою втирають розчин гибітану і одягають стерильні рукавички.

Підготовка операційного поля

Для обробки порожнини рота перед операцією використовують полоскання теплим розчином фурациліну 1:5000, 0,06% розчином хлоргексидину, 0,1% розчином перманганату калію.

На ділянці операційного поля проводять механічне видалення нальоту і харчових залишків марлевим тампоном, змоченим одним із зазначених вище розчинів. Знімають тверді зубні відкладення з видаленого зуба і поруч розташованих зубів, через небезпеку попадання їх в лунку і інфікування її під час операції. Слизова оболонка у коло краю ясен обробляється 1-2% настойкою йоду.

Шкіра обличчя при більш великих операціях обробляють 70% етиловим спиртом або 0,5% спиртовим розчином хлоргексидину біглюконату і закривається стерильною накидкою або стерильним рушником.

^ Заходи захисту персоналу. Профілактика Сніду і гепатиту

В цілях охорони праці і попередження інфікування персоналу стоматологічних поліклінік, відділень і кабінетів, їх співробітниками повинні дотримуватися певні вимоги, передбачені правилами техніки безпеки.

1. Кожен працівник при прийомі на роботу забезпечується спеціальним одягом (халат, костюм, шапочка, взуття), дезінфекція та прання якої проводиться централізовано або в лікувальному закладі, або в пральнях. Неприпустима прання спецодягу в домашніх умовах. Персонал відділень зобов’язаний працювати у змінному взутті.

2. Весь персонал стоматологічних кабінетів повинен працювати в рукавичках. Дрібні садна і рани на пальцях і кистях необхідно заклеювати лейкопластиром, користуватися напалечниками. В кабінетах ве доведеться «Журнал біологічних аварій».

^ 3. При обробці зубів, роботі в порожнині рота лікар повинен одягати захисні окуляри, маску або щиток.

4. Неодмінна умова – дотримання правил особистої гігієни, миття рук перед і після кожного пацієнта, дезінфекція рук і рукавичок.

5. Приготування робочих розчинів будь-яких дезінфікуючих засобів проводять в гумових рукавичках, запобіжних окулярах і респіраторі.

6. При попаданні пергідролю й інших сильнодіючих речовин на шкіру негайно промити водою або нейтралізуючими засобами.

7. Не допускається включення ультрафіолетових бактерицидних ламп при температурі навколишнього повітря вище 30°С, оскільки при цьому можливий перегрів приладів включення, вихід їх з ладу і виникнення пожежі.

8. Категорично забороняється включати ультразвукову установку, не затоку розчин у ванну.

9. Забороняється опускати інструменти в розчин і витягувати їх з розчину під час роботи УЗ.

10. Перед зливом розчину з ванни необхідно відключити установку від електромережі.

11. Не можна при включених в мережу стоматологічних установках проводити генеральне прибирання.

При забрудненні шкірних покривів кров’ю або іншими біологічними рідинами шкіру обробити дезинфікуючим розчином або 70° спиртом. При порушенні цілісності шкірних покривів не зупиняють кровотечу, а видавлюють кров з рани, промивають рану водою і обробляють 5% спиртовим розчином йоду.

До універсальних заходів безпеки медичного персоналу від інфекції належать 7 правил безпеки для захисту шкіри і слизових оболонок при контакті з кров’ю або рідкими виділеннями організму будь-якого пацієнта:

1. Мити руки до і після будь-якого контакту з пацієнтом.

2. Розглядати кров і рідкі виділення всіх пацієнтів як потенційно інфіковані і працювати з ними тільки в рукавичках.

3. Відразу після застосування поміщати використані шприци і катетери в спеціальний контейнер для утилізації гострих предметів, ніколи не знімати зі шприців голкотримачі з голками і не виробляти ніяких маніпуляцій з використаними голками!

4. Користуватися засобами захисту очей і масками для запобігання можливого попадання бризок крові або рідкого відокремлюваного порожнини рота в обличчя (під час хірургічних операцій, маніпуляцій, каті теризации та лікувальних процедур у порожнині рота).

^ 5. Використовувати спеціальну вологозахисний одяг для захисту тіла від можливого попадання бризок крові або рідкого відокремлюваного порожнини рота.

В аптечку для надання екстреної допомоги при попаданні крові на шкіру і слизові оболонки, уколах і порізах входять:

1. Розчин йоду 5% спиртовий.

2. Етиловий спирт 70°.

3. Вата, бинт.

4. Лейкопластир.

5. Навішування марганцевокислого калію по 0,05 г для приготування 0,05% розчину.

6. Дистильована вода в ампулах по 10 мл

7. Ємність для приготування розчину марганцевокислого калію.

8. Піпетки для очей і носа.

Короткий опис статті: антисептики в стоматології Розмір: 1.08 Mb.; антисептики в стоматології

Джерело: Тема. Асептика і антисептика. Профілактика Сніду і гепатиту — Тема. Організація хірургічного кабінету (відділення).

Також ви можете прочитати